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一種基于磁珠法純化非特異性擴增pcr產(chǎn)物的方法

文檔序號:8246778閱讀:944來源:國知局
一種基于磁珠法純化非特異性擴增pcr產(chǎn)物的方法
【技術(shù)領(lǐng)域】
[0001]本發(fā)明屬于生物技術(shù)領(lǐng)域,具體涉及一種基于磁珠法純化非特異性擴增PCR產(chǎn)物的方法。
【背景技術(shù)】
[0002]聚合酶鏈反應(yīng),簡稱PCR。聚合酶鏈反應(yīng)是體外酶促合成特異DNA片段的一種方法,由高溫變性、低溫退火及適溫延伸等幾步反應(yīng)組成一個周期,循環(huán)進行,使目的DNA得以迅速擴增,具有特異性強、靈敏度高、操作簡便、省時等特點。它不僅可用于基因分離、克隆和核酸序列分析等基礎(chǔ)研宄,還可用于疾病的診斷或任何有DNA,RNA的地方。聚合酶鏈反應(yīng)又稱無細胞分子克隆或特異性DNA序列體外引物定向酶促擴增技術(shù)。
[0003]PCR擴增后出現(xiàn)的條帶與預(yù)計的大小不一致,或大或小,或者同時出現(xiàn)特異性擴增帶與非特異性擴增帶。非特異性條帶的出現(xiàn),其原因:一是引物與靶序列不完全互補、或引物聚合形成二聚體;二是Mg2+離子濃度過高、退火溫度過低,及PCR循環(huán)次數(shù)過多有關(guān)。其次是酶的質(zhì)和量,往往一些來源的酶易出現(xiàn)非特異條帶而另一來源的酶則不出現(xiàn),酶量過多有時也會出現(xiàn)非特異性擴增。其對策有:必要時重新設(shè)計引物;減低酶量或調(diào)換另一來源的酶;降低引物量,適當增加模板量,減少循環(huán)次數(shù);適當提高退火溫度或采用二溫度點法(93°C變性,65°C左右退火與延伸)。
[0004]然而有時改變擴增條件,PCR產(chǎn)物中仍存在非特異性擴增條帶。同時因為PCR反應(yīng)體系中含有dNTP、Mg2+、DNA聚合酶等物質(zhì),這些物質(zhì)會對下游的實驗產(chǎn)生影響,因此需要對獲得的非特異性擴增PCR產(chǎn)物進行進一步的純化。目前常用的非特異性擴增PCR產(chǎn)物的回收方法基本上都是吸附柱回收法。利用磁珠法來純化非特異性擴增PCR產(chǎn)物的方法目前未見報道。磁珠法純化DNA主要是利用交換吸附材料吸附核酸,從而將核酸和其他雜質(zhì)分離。

【發(fā)明內(nèi)容】

[0005]本發(fā)明的目的在于提供一種簡單、快速的基于磁珠法純化非特異性擴增PCR產(chǎn)物的方法。
[0006]為實現(xiàn)上述目的,本發(fā)明采用如下技術(shù)方案:
[0007]一種基于磁珠法純化非特異性擴增PCR產(chǎn)物的方法,包括以下步驟:
[0008]I)通過瓊脂糖凝膠檢測PCR產(chǎn)物,當觀察到非特異性條帶與目的性條帶分開時,用干凈的小刀將目的條帶切下,放入離心管中,然后在離心管中加入工作液A,所述目的條帶與工作液A的重量比為1:3,然后于50-70°C溫育8-15min ;
[0009]2)加入與上述離心管中的溶液等體積的工作液B,震蕩10-30s,室溫放置1-1Omin后,將離心管放在磁力架上,進行磁珠分離,待磁珠吸附到離心管一側(cè)時,吸去液體,保留磁珠;
[0010]3)往上述含有磁珠的離心管中加入0.5-1.5ml工作液C,打勻后室溫靜置5-10min,將離心管放在磁力架上,進行磁珠分離,待磁珠吸附到離心管一側(cè)時,吸去液體,保留磁珠;
[0011]4)往上述含有磁珠的離心管中加入30-60 μ I工作液D,將離心管放在磁力架上,進行磁珠分離,待磁珠吸附到離心管一側(cè)時,吸取溶液,此溶液即為回收后的PCR產(chǎn)物,后續(xù)于1%瓊脂糖凝膠中進行電泳檢測;
[0012]所述工作液A由終濃度4-8mol/L NaClOjP終濃度0.01-0.lmol/L NaAc組成,pH=5-6 ;
[0013]所述工作液B由異丙醇和磁珠混懸液按照體積比24:1混合配制而成,其中,所述磁珠混懸液由磁珠和水按照體積比1:2混合配置而成;
[0014]所述工作液C由終濃度4.3-21.4mmol/L三羥甲基氨基甲烷(Tris),終濃度
2.1-4.2mmol/L乙二胺四乙酸(EDTA),終濃度42.9-85.7mmol/L Nacl和體積終濃度60-80%無水乙醇組成;
[0015]所述工作液D為5-10mmol/L三羥甲基氨基甲烷(Tris),pH = 7.0-9.0。
[0016]所述磁珠為硅基生物磁珠,粒徑為lum,購買自溫州安科納米科技有限公司,產(chǎn)品編號:AK1-G1000o
[0017]本發(fā)明所述終濃度是指溶液在工作液中的終濃度,例如所述工作液A由終濃度
4-8mol/L NaClO4和終濃度 0.01-0.lmol/L NaAc 組成,pH = 5-6,是指 NaClO 4在工作液 A中的濃度為4-8mol/L,NaAc在工作液A中的濃度為0.01-0.lmol/Lo
[0018]進一步,所述工作液A由終濃度6mol/L NaClO4和終濃度0.012mol/L NaAc組成,pH = 5.2o
[0019]進一步,所述工作液C由終濃度8.6mmol/L三羥甲基氨基甲烷(Tris),終濃度
3.4mmol/L乙二胺四乙酸(EDTA),終濃度60mmol/L Nacl和體積終濃度70%無水乙醇組成。
[0020]進一步,所述工作液D為8mmol/L三輕甲基氨基甲燒(Tris),pH = 8.0。
[0021]本發(fā)明采用以上技術(shù)方案,通過磁珠法來純化非特異性擴增PCR產(chǎn)物,其最大優(yōu)點就是自動化,磁珠在磁場條件下可以發(fā)生聚集或分散,整個流程方便快捷,不需要使用到離心機等設(shè)備。本發(fā)明方法能簡單、快速地純化非特異性擴增的PCR產(chǎn)物,與以往的非特異性擴增的PCR產(chǎn)物純化方法相比,本方法不需要使用離心機等大型儀器,便于小實驗室更好地開展分子生物學(xué)的相關(guān)研宄。
【附圖說明】
[0022]圖1為非特異性擴增PCR產(chǎn)物檢測結(jié)果:泳道1,2,3,4是四管重復(fù)的非特異性擴增PCR產(chǎn)物,泳道5是TAKARA公司的DL4500 marker ;
[0023]圖2為純化后的PCR產(chǎn)物檢測結(jié)果:泳道I是純化后的PCR產(chǎn)物,泳道2是TAKARA公司的 DL4500 marker ο
【具體實施方式】
[0024]一種基于磁珠法純化非特異性擴增PCR產(chǎn)物的方法,其特征在于:其包括以下步驟:
[0025]I)通過瓊脂糖凝膠檢測PCR產(chǎn)物,當觀察到非特異性條帶與目的性條帶分開時,用干凈的小刀將目的條帶切下,放入離心管中,然后在離心管中加入工作液A,所述目的條帶與工作液A的重量比為1:3,然后于50-70°C溫育8-15min ;
[0026]2)加入與上述離心管中的溶液等體積的工作液B,震蕩10-30s,室溫放置1-1Omin后,將離心管放在磁力架上,進行磁珠分離,待磁珠吸附到離心管一側(cè)時,吸去液體,保留磁珠;
[0027]3)往上述含有磁珠的離心管中加入0.5-1.5ml工作液C,打勻后室溫靜置
5-10min,將離心管放在磁力架上,進行磁珠分離,待磁珠吸附到離心管一側(cè)時,吸去液體,保留磁珠;
[0028]4)往上述含有磁珠的離心管中加入30-60 μ I工作液D,將離心管放在磁力架上,進行磁珠分離,待磁珠吸附到離心管一側(cè)時,吸取溶液,此溶液即為回收后的PCR產(chǎn)物,后續(xù)于1%瓊脂糖凝膠中進行電泳檢測;
[0029]所述工作液A由終濃度4-8mol/L NaClOjP終濃度0.01-0.lmol/L NaAc組成,pH=5-6 ;
[0030]所述工作液B由異丙醇和磁珠混懸液按照體積比24:1混合配制而成,其中,所述磁珠混懸液由磁珠和水按照體積比1:2混合配置而成;
[0031]所述工作液C由終濃度4.3-21.4mmol/L三羥甲基氨基甲烷(Tris),終濃度
2.1-4.2mmol/L乙二胺四乙酸(EDTA),終濃度42.9-85.7mmol/L Nacl和體積終濃度60-80%無水乙醇組成;
[0032]所述工作液D為5-10mmol/L三羥甲基氨基甲烷(Tris),pH = 7.0-9.0。
[0033]實施例1
[0034]一種基于磁珠法純化非特異性擴增PCR產(chǎn)物的方法,其特征在于:其包括以下步驟:
[0035]I)通過瓊脂糖凝膠檢測PCR產(chǎn)物,當觀察到非特異性條帶與目的性條帶分開時,用干凈的小刀將目的條帶切下,放入離心管中,然后在離心管中加入工作液A,所述目的條帶與工作液A的重量比為1:3,然后于60°C溫育1min ;
[0036]2)加入與上述離心管中的溶液等體積的工作液B,震蕩30s,室溫放置1min后,將離心管放在磁力架上,進行磁珠分離,待磁珠吸附到離心管一側(cè)時,吸去液體,保留磁
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